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方法与工具Cell Genomics · 多机构变异检测基准评测

低等位基因频率嵌合突变的检测:基于细胞系混合物的多机构基准评测

Detecting low-allele-fraction mosaic mutations: A multi-institution benchmarking with cell-line mixtures.

一句话建立细胞系混合物基准评测框架,为非癌组织低等位基因频率突变检测提供参考资源与最佳实践。

研究问题

不同变异检测流程在低VAF嵌合突变检测中的表现如何?测序深度、基因组可比对性及重复样本的随机抽样如何影响检测结果?

数据与样本

采用1:49的细胞系混合物,由5个中心生成超深度短读长和长读长全基因组测序数据,每个中心测序深度为170×-470×。7家机构参与评测,共应用12条分析流程。

分析流程

  1. 1构建评测材料:制备1:49的细胞系混合物,并在5个中心开展超深度短读长和长读长全基因组测序。
  2. 2建立参考集:汇集嵌合SNVs和indels,并用长读长数据交叉验证以识别短读长的局限。
  3. 3控制参考背景:加入阴性参考集,并将培养过程中产生的突变纳入考量。
  4. 4划分基因组区域:按可比对性对基因组分区,考察基因组背景对检测的影响。
  5. 5比较检测流程:由7家机构应用12条流程,比较不同工具及重复样本间的变异检出集合。
  6. 6评估深度收益:结合VAF与测序深度评估灵敏度和精确率,以及增加测序量的增益。

关键方法与工具

short- and long-read whole-genome sequencing
生成评测与交叉验证数据

设计思路

以固定比例的细胞系混合物作为共同评测材料,通过多中心测序和多机构流程比较,检验检测结果的一致性。结合长读长交叉验证、阴性参考集、可比对性分区及培养来源突变考量,从多个层面评估检测误差与基因组背景的影响。

主要发现

  • 7家机构应用12条流程后,不同工具和重复样本间的变异检出集合存在较大不一致。
  • 上述不一致部分反映了生物学重复样本中低VAF突变的随机抽样效应。
  • 对于VAFs高于2%的SNVs,在≥300×时,灵敏度和精确率接近80%,进一步增加测序量的增益很小。
  • 研究建立了面向非癌组织低VAF突变检测的基准评测框架和参考资源。

可借鉴之处

  • 开展低频突变检测方法评估时,可借鉴固定比例细胞系混合物与多流程比较的设计,同时检查工具差异和生物学重复间的一致性。
  • 构建参考集时,可借鉴长读长交叉验证、阴性参考集和培养来源突变考量的组合,而非仅依赖短读长检出结果。
  • 测序方案优化可同时考察VAF分层、测序深度与灵敏度和精确率,识别继续加深测序的收益是否有限。

数据与代码

摘要提及构建了嵌合SNVs和indels参考集及阴性参考集,但未提供数据存放位置、编号或代码仓库。

局限

  • 评测基于细胞系混合物,其结果对真实非癌组织样本的适用性仍受这一模型设计限制。
  • 接近80%的灵敏度和精确率结果针对VAFs高于2%的SNVs,不能直接外推至更低VAF或indels。

摘要(中文翻译)

正常组织中的嵌合突变具有较低的变异等位基因频率(VAFs),使其检测更为困难。为对变异检测策略开展基准评测,SMaHT Network 制备了细胞系混合物(1:49),并在5个中心生成了超深度短读长和长读长全基因组测序数据(每个中心170×-470×)。我们构建了嵌合单核苷酸变异(SNVs)和插入缺失(indels)的参考集,并使用长读长数据进行交叉验证,以揭示短读长的局限。我们还根据可比对性对基因组进行分区,以考察基因组背景的影响,加入了阴性参考集,并将培养过程中产生的突变纳入考量。当7家机构应用12条分析流程时,不同工具和重复样本间的变异检出集合存在较大不一致,部分反映了生物学重复样本中低VAF突变的随机抽样效应。对于VAFs高于2%的SNVs,在≥300×时,灵敏度和精确率接近80%,进一步增加测序量带来的增益很小。本研究为可靠检测非癌组织中的低VAF突变建立了框架和最佳实践,并为研究群体提供了有价值的资源。

英文原文摘要

Mosaic mutations in normal tissues occur at low variant allele fractions (VAFs), complicating detection. To benchmark variant-calling strategies, the SMaHT Network created a cell-line mixture (1:49) and produced ultra-deep short- and long-read whole-genome sequencing data across five centers (170×-470× per center). We assembled a reference set of mosaic SNVs and indels, cross-validated with long-read data to expose short-read limitations. We also partitioned the genome by mappability to examine the impact of genomic context, added a negative reference set, and accounted for culture-derived mutations. When seven institutions applied twelve pipelines, callsets were largely discordant across tools and replicates, partly reflecting stochastic sampling of low-VAF mutations in biological replicates. For SNVs with VAFs above 2%, sensitivity and precision approached 80% at ≥300×, with little gain from additional sequencing. This work establishes a framework and best practices for reliably detecting low-VAF mutations in non-cancer tissues and provides a valuable resource for the community.

摘要来自 PubMed。翻译与解读由模型根据摘要生成,可能有误,不构成诊疗建议;数据以原文为准,版权归原出版方所有。